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***组化染色呈阴性结果的原因有哪些？1)、抗体浓度和质量问题以及抗体来源选择错误。不知抗体是进口的还是国产的工作液，怎么这么高稀释度也没能做出阳性结果？另外，不是抗体浓度越高就越易出现阳性结果，抗原抗体反应有前带和后带效应，必须摸索比较好浓度。2)、抗原修复不全，对于甲醛固定的组织必须用充分抗原修复来打开抗原表位，以利于与抗体结合；建议微波修复用高火4次*6min试试。有人做过实验，这是比较好的时间和次数。若不行，还可高压修复。3)、组织切片本身这种抗原含量低；4)、血清封闭时间过长。5)、DAB孵育时间过短。6)、细胞通透不全，抗体未能充分进入胞内参与反应。7)、开始做***组化，我建议你一定要首先做个阳性对照片，排除抗体等外的方法问题。IGFBP-1LabEx提供 炎症因子、趋化因子、生长因子等高通量高灵敏检测。

液相悬浮芯片技术产品多因子技术可同时检测多个样本的多个指标，如通路中多个相关蛋白的共检测。虽然液相蛋白定量检测的技术很多，但是大多数的技术能对样本进行单一指标的检测，同时检测多个指标时则需要提供大量的样本分批检测，操作繁琐，且各指标间差异性较大。对于样本量较少或需要对比各指标的用户，传统的技术无法满足需要。日常实验中，常需对溶液体系中的可溶性蛋白进行定量检测，如细胞培养上清或血清中的细胞因子含量的定量分析，由于这些因子的含量较少，低于一般常规方法的检测下限，使用常规的蛋白检测方法如WesternBlot等很难检测。而多因子技术样本需求量少（25~60μL/孔），检测指标多，可兼容血清/血浆，细胞上清，细胞/组织裂解液，脑脊液等多种生物学体液。其灵敏度高（部分panel可达到亚fg/ml），宽线性范围（达到6个log），具有高重复性（板内CV<6-8%，板间<10%，批间<15%），适宜多类型指标的同时测定（炎症，趋化，代谢……）。

MSD超敏电化学发光技术优势:1）更高灵敏度与更宽的线性范围MSD灵敏度可达0.05pg/ml,有效线性范围达6log（从亚皮克级到几万皮克），能同时兼顾高低丰度蛋白的检测。2）样本兼容度高，基质效应小MSD平台由于其独特的电化学发光原理，可将许多非特异信号予以排除，受样本性质的影响更小（如粘稠样本，悬浊颗粒样本等），因此对于各类生物学样本的兼容度高。目前测定样本包括但不限于：血清，血浆，培养上清，细胞/组织裂解液，脑脊液，尿液，眼睛房水，灌洗液等生物学样本。3）节省样本用量，可实现多重检测传统ELISA每孔所需样本量一般为50-100uloMSD通过点阵技术，为珍稀样本的研究提供了更多的数据。4）实验流程简便、快速、多元化MSD提供了更为便捷快速的实验流程，通常只需4-5小时5）信号稳定且不受显色顺序影响MSD由于基于电化学发光原理，信号分子需在电激发的情况下才能产生信号，因此整个实验流程无需避光，每孔激发与信号采集时长统一，避免了像ELISA底物与终止液加入顺序先后所导致的数据差异，不受操作人员技术水平差异的影响。LabEx提供抗体蛋白质芯片,sengenics服务！

产生组织切片非特异性染色的原因有哪些？如何解决？1)、抗体孵育时间过长、抗体浓度高易增加背景着色。这可通过缩短一抗/二抗孵育时间、稀释抗体来控制。这是尤其重要的一条。2)、一抗用多克隆抗体易出现非特异性着色，建议试用单克隆抗体看看。3)、内源性过氧化物酶和生物素在肝脏、肾脏等组织含量很高（含血细胞多的组织），需要通过延长灭活时间和增加灭活剂浓度来降低背景染色；4)、非特异性组分与抗体结合，这需要通过延长二抗来源的动物***血清封闭时间和适当增加浓度来加强封闭效果；5)、DAB孵育时间过长或浓度过高；6)、PBS冲洗不充分，残留抗体结果增强着色，在一抗/二抗/SP孵育后的浸洗尤为重要；7)、标本染色过程中经常出现干片，这容易增强非特异性着色。LabEx多因子检测技术应用。Acrp30

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肿块物（瘤类）发病机制中的细胞因子（内源性及相关功能）：Il-1（白介素1）：肿块物侵袭和血管生成所必需的IL-6（白介素6）：化学诱导的淋巴瘤所需IL-12（白介素12）：抑制化学致肿块物作用IL-15（白介素15）：促进自然杀伤T细胞白血病IFN-γ：抑制化学致肿块物作用；抑制淋巴瘤；Stat1和Rag2抑制肿块物M-CSF：促进乳腺肿块物侵袭GM-CSF：抑制淋巴瘤和肿块物TNF-α：化学诱发的皮肤肿块物所需MIF：抑制p53肿块物抑制功能TGF-β：抑制结肠肿块物Fas-Fasligand：抑制淋巴瘤发生Carbonic Anhydrase IX

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